Co-IP常见问题深度解析一高背景或非特异性条带

类别: 新闻资讯 日期: 2025-03-14 作者: Editor

 

本文章主要针对Co-IP实验常见问题之高背景或非特异性条带的原因与解决方案,导致Co-IP实验高背景或非特异性条带可能的原因包括:抗体问题(一抗或二抗的非特异性结合)、封闭不充分、裂解液配方不合适、洗涤不彻底、蛋白浓度过高、实验条件(如温度、时间)不当等。解决方案可能涉及优化抗体浓度,选择合适的封闭剂,调整裂解液成分,增加洗涤次数,使用预清除步骤等。

 

 

抗体相关因素

一抗特异性问题

01

选择抗体时,选择使用敲除(KO)细胞验证抗体特异性,优先选择有IP验证数据的单克隆抗体,或者选择质粒过表达带蛋白标签(如:Flag,HA等),用更成熟的标签抗体进项IP实验。

优化参考:抗体选择Western Blot检测KO细胞无信号;IP抗体需标注“Validated for IP”

抗体浓度过高

02

梯度稀释一抗(建议0.5-2 μg/mL),二抗按说明书减半浓度使用,降低非特异性结合。

优化流程:设置预实验,按照0.2/0.5/1/2 μg/mL一抗梯度来进行IP实验

 

 

 

样本处理与裂解液问题

蛋白样本浓度过高或上样量过大

01

减少裂解液浓度(推荐总蛋白浓度≤2mg/ml,若是高浓度高样本,可用裂解液稀释样本);beads与样本结合后,将洗涤次数增加2-3次。

裂解液去垢剂浓度不当

02

调整NP-40浓度(0.1%-1%),难裂解样本可增加NP-40浓度

推荐配方:25 mM Tris-HCl (pH7.5), 150 mM NaCl, 1% NP-40, 1 mM EDTA +蛋白酶抑制剂

内源性IgG干扰

03

细胞培养基中存在血清,血清中有大量抗体,未清洗干净对结果产生干扰,裂解前用PBS洗涤细胞3次,尽最大程度去除培养基的血清成分。

 

 

 

实验操作关键点优化

封闭不充分

01

封闭时间延长至2小时(4℃)

预清除缺失

02

添加预清除步骤:用Protein A/G珠子 + 同型IgG孵育裂解液1小时,去除非特异结合

非特异性较强结合导致清洗不彻底

03

增加洗涤次数至5次,使用高盐缓冲液(含300-500 mM NaCl)或添加0.1% SDS的洗涤液

 

 

 

对照设计与异常排查

Input对照

01

直接检测裂解液中的目标蛋白,验证抗体有效性,Input无信号需检查裂解效率或抗体失效

阳性对照

02

使用已知互作蛋白对(如MYC-MAX)验证实验体系,阳性对照失败需排查裂解液配方或操作温度

阴性对照(IgG对照)

03

使用同种属同亚型非特异IgG,排除抗体非特异结合,若IgG对照组出现相同条带,需更换抗体或加强封闭

 

 

 

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